酸水解法分析蛋白质的氨基酸组成是氨基酸分析中最常用的方法。该方法除了使色氨酸遭到破坏,不能被检测以外,其余17种L-型氨基酸均能得到测定分析,其中它括谷氨酰胺水解为谷氨酸,天冬酰胺水解为天门冬氨酸。
(1)常用的酸水解方法是采用5.7 mol/L盐酸真空状态下110 ℃水解24 h或150 ℃快速水解90 min。因为长时间高温水解会破坏含羟基的氨基酸如丝氨酸、苏氨酸、酪氨酸,因此在不影响水解效果的前提下,应尽量降低水解温度和缩短水解时间。由于半胱氨酸和甲硫氨酸具有还原性,易被空气中残留的微量氧气氧化,因此加入10 g/L苯酚作为抗氧剂。
(2)氨基酸测定方法可分为柱前衍生法和柱后衍生法。柱前衍生法是将氨基酸与衍生化试剂先反应生成氨基酸衍生物,然后用色谱柱进行分离,通过紫外或荧光检测器可直接检测衍生物的光吸收或荧光发射,具有灵敏度高,可用HPLC进行分析等优点。目前常用的柱前衍生试剂有邻苯二甲醛(OPA)和异硫氰酸苯酯(PITC)。PITC具有可与伯胺、仲胺反应,衍生物稳定等优点,被应用于硫酸卡那霉素及其注射液的测定。香菇多糖-十八氨基酸口服液中氨基酸的含量测定及体液游离氨基酸的测定等。本文采用PITC柱前衍生法测定样品水解物中的游离氨基酸,各种氨基酸能达到较好的分离,分离度均大于1.5,检测灵敏度可达到5 pmol左右,并具有良好的线性范围,衍生物稳定。
(3)氨基酸的测定可采用内标法和外标法。内标法可消除操作带来的实验误差,提高结果的准确性和重现性。其中PITC柱前衍生法常用的内标物有a-氨基丁醇、蛋氨酸砜、己氨酸等。本文采用正亮氨酸为内标物,内标物的保留时间在亮氨酸与苯丙氨酸之间,并且能与这两个氨基酸分开,保证了测定结果的稳定性。
(4)采用酸水解法,对色氨酸的破坏较严重,测定值与理论值的偏差为73%。因此要测定色氨酸的组成,可参考文献采用在酸水解中加添加剂如巯基乙酸、B-巯基乙醇或用氢氧化钠和氢氧化钡的碱水解法,另外3 mol/L巯基乙磺酸或4 mol/L甲磺酸在水解时对色氨酸有一定的保护作用。
从3种蛋白样品氨基酸组成分析结果看,Asp+Asn(属酸性氨基酸)的含量最高,EWD1蛋白样品中占12.10%,EWD2蛋白样品中占12.90%,这与双向电泳结果显示3种蛋白的等电点在酸性端相一致[1]。EWD2蛋白样品中Leu氨基酸含量较高,占9.99%,这与EWD2 N端测序结果也相一致(EWD2蛋白样品N端9个氨基酸序列中,Leu占到2个)。另外,从氨基酸组成分析图谱中发现,3种蛋白的谱图中,在A和P之间都存在一个非氨基酸的峰,考虑可能为氨基酸存在修饰或氨基酸上连有糖链。
Edman降解法是目前用于顺序分析的最主要的方法。它的原理是从N端开始,逐步降解。将肽先与PITC在pH 8.0-9.0条件下作用,肽的氨基末端接到异硫氰酸苯酯的C原子上生成苯异硫甲氨酰肽,简称PTC肽,在强酸作用下,可使靠近PTC基的氨基酸环化,肽键断裂形成苯氨基噻唑啉酮衍生物和一个失去末端氨基酸的肽链。此肽不被破坏,因而又可出现一个新的N-末端。重复以上的步骤,继续与PITC作用,继续分析,苯氨基噻唑啉酮衍生物很容易由有机溶剂抽提出来进行鉴定。但此衍生物很不稳定,在水中可转化为稳定的乙内酰苯硫脲氨基酸。这些步骤通常称为Edman氏逐步降解法。所以可用来测定氨基酸的排列顺序。Edman降解法的优点是样品用量少,灵敏度高。Edman降解法得到的氨基酸序列可以为后面克隆cDNA序列提供依据,是很重要的结构研究的内容。
液相色谱-串联质谱(LC-MS/MS)的结果,得到2种蛋白的部分氨基酸序列,与数据库进行同源性比较,提示本实验纯化的2种蛋白均为新蛋白。质谱测定还提供了蛋白的二硫键信息和糖链的信息,为后面的进一步研究提供了基础。
在真核细胞中,有一半以上的蛋白质被糖基化
[24] 。所有生物的细胞表面都由很多不同类型的糖链所包被,并且细胞内也存在各种类型的糖基化;蛋白质糖基化在蛋白质折叠、蛋白质定位和转运、蛋白质溶解性、抗原性以及细胞与细胞的相互作用等方面都有着重要的作用。已知糖基化作用是溶酶体蛋白转运的一个组成部分,甘露糖-6-磷酸是可溶性蛋白转运进入溶酶体的识别信号。对糖蛋白类酶的突变体的研究表明,失去了一个或多个不同的糖基化位点,对形成有活性的酶影响最大。多个糖基化位点突变而只保留一个位点,表达不出有活性的酶,提示多个位点同时糖基化,对酶的转运和活性的形成是必需的,可能是作为溶酶体的定位信号。